洋ラン学園
洋ラン大学院
新芽が出てから咲くまで
−花芽と葉芽
花芽分化
1 初めに
複茎種では、基本的には、毎年開花した株の根元から新芽が出て、開花期までに大きくなり、無事親と同じ位までの大きさに育つと、翌年にも咲きます。
株が小さかったりして元気がないと、新芽が出なかったり、出るのが遅く十分に育たなかったりして、花が咲きません。
一方、大株になると、匍匐系が分かれてその先々で新芽が出たり、何年か前の開花株の根元からも新芽が出たり、1年経たないうちに新芽の脇からもう一つ新芽が出たりするようになります。こうなると、新芽が全て咲くわけではなく、大きくなった芽だけとか、適期に出た芽だけが咲き、後は花が咲かずに終わってしまいます。株を大きくし、全体として咲かせやすくする役割はあるのですが、花を咲かせるという点から見ると効率が悪くなり、がっかりします。
特にカトレヤの場合は、一旦シースや蕾が出て咲きそこなった場合は、その芽はもう咲くことはありません。
また、デンドロビウムの場合は、新芽は1年目には親株と同じ大きさになっても咲かず、2年目には主に太くなって、落葉して咲くと言うのが普通です。
しかし、パフィオペディルムの場合は、1年目に咲き損なっても、新芽はさらに生長を続け、2年目に株によっては咲きます。
そこで、種類によっても異なる、新芽が出てから咲くまでの様子を調べて、整理してみました。
2 主な属の新芽の出方と咲き方のあらまし
色々な新芽の出方、カトレヤを例に
1 基本
花が咲くとほぼ同時に、花の咲いている新芽の根元から、次の新芽が出てきます。
2 大株の
しかし、大株になると、花の咲かなかった新芽からは早く芽が出ますが、花の咲いている株の新芽の出方はやや遅れます。また、新芽が大きくなると、半年後にさらに新芽が出ることがあります。さらに、古株からも新芽が出たり、新芽が親株の両側から2個同時、またはやや時期を置いて出ることもあります。
3 新芽の咲き方
1 基本−大部分の複茎種新芽が1年かけて生長して開花
親株が大きくて、冬−春咲きの場合は冬暖かくて新芽の出が早いと、新芽が1年後までに十分大きくなって咲きます。
2 新芽が大きくならないうちにまたは短期間で開花−カトレヤ不定期咲やジゴペタラムなど
カトレヤの不定期咲では、新芽が出てから半年足らずで、バルブができないうちに咲きます。
ジゴペタラムも、新芽が10cm前後まで大きくなると花茎が出てきます。バルブができるのは咲いた後です。
3 新芽が大きくならないうちに次の新芽が出て、後の方だけ咲く−カトレヤの大株など
カトレヤの多くは、大株になると、1年に何回も新芽が出ます。新芽が十分大きくならないうちに次の新芽が出てしまうと、元の新芽は咲かないようです。
4 新芽が2年以上かけて咲く−デンドロビウムのノビル系、パフィオの未熟新芽
デンドロビウムのノビル系は、開花株を入手すると、大抵その隣に新芽がほぼ開花株と同じ大きさまで伸びています。つまり、新芽は出た年には咲かず、翌年に太って充実すると咲きます。ただし、最近は新芽に咲く種類も出回っています。
パフィオペディルムは、新芽が出ても、十分大きくならずに咲かないことが良くあります。バルブを作らず親株に栄養が十分蓄えられないことも関係していると思われます。その代わり、この新芽はさらに生長を続け新葉を出し続けます。そして、元気が良いと、翌年に花を咲かせることがあります。デンドロビウムのノビル系と同様に2年がかりで咲くわけです。
花芽分化
初めに
花は咲くよりもずっと前に外からは分からない原形ができ始めます(花芽分化)。それからしばらくして、花芽が形を現わします。花を咲かせる始まりは、花芽ができるかどうかです。外からは見えないため何時どのようにできるかも分かりません。
そこで専門的な研究が行われています。
カトレヤ
力トレア類の発育習性解明による生産安定技術の確立 第3報 力トレア類の生長と分化
久地井恵美・峯岸長利・山中昭雄
栃木農試研報 No.36:123〜127(1989)
摘要
5月13日,11月11日,1月8日の3回長さ3,6,12,24,のシュートについて花芽の状態と開花について調べた結果,品種,季節にかかわらず,シュート長6cm以上,抽出鞘葉数7枚で花芽分化が確認された.
シンビジウム
ランの花芽形成-1-小形シンビジウムの花芽分化と発育〔英文〕Flower Bud Formation in Orchids : I. On the Floral Initiation and Development in Miniature Cymbidiums
千葉大学園芸学部学術報告 19, 23-27, 1971-12-31
ランの花芽形成I小形シンビジウムの花芽分化と発育小形シンビジウムの栽培種'白玉錦'の花芽形成について1966年および1967年に,千葉県松戸市の千葉大園芸学部において実験を行なった.その結果,1966年には7月上旬に花芽分化が始まり,7月下旬には,やく・柱頭形成の段階まで花芽が発育した。1967年には6月下旬に花芽分化が始まり,8月上旬に,やく・柱頭形成の段階まで進んだ.
Flower bud formation in orchids. I. On the floral initiation and development in miniature cymbidiums., K. KOSUGI, M. YOKOI, N. ASAI and K. MATSUDA, Faculty of Horticulture, Chiba University, Matsudo, Japan. Tech. Bull. Fac. Hort. Chiba. Univ. No.19: 23-27, 1971. Flower bud formation in miniature cymbidium cultivar 'Shiratama-Nishiki' was observed in the plants grown in the greenhouse of Faculty of Horticulture, Chiba University in 1966 and 1967. Flower bud initiaton in this cultivar occurred in early July in 1966 and late June in 1967 and the flower buds developed to the pollen sac and stigma formation stage by late July in 1966, and early August in 1967.
BULLETIN OF EXPERIMENTAL FARM KYOTO UNIVERSITY
(since 1988, ISSN: 0915-0838)
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original paper
vol.11 (2002)
Leaf Coloration in Caladium Cultivars during Plant Growth and Development.
Eakhkas U. Ahmed, Takahiro Hayashi and Susumu Yazawa
Studies on flowering of kurumetsutsuzi (Rhododendron Kurume Azalea Hybrids)
1. Effects of growth retardants on flower bud formation and flowering. (In Japanese with English abstract)
Koshiro Kawase and Kunihiko Yokoi
vol.10 (2001)
Effects of top removal of new corm on the corm yield and the corm shape of mutant of taro. (In Japanese with English abstract)
Takashi Morita, Kazuo Kimura, Keiko Kataoka, Takashi Fudano and Koshiro Kawase
Effect of the fog cooling system on the air temperature of glasshouse in summer. (In Japanese with English abstract)
Keiko Kataoka, Tsuyoshi Konishi, Kouji Nishikawa, Takashi Fudano and Takashi Morita
Effect of day length on flower bud differentiation and development, and flowering in satsuki (Rhododendron Satsuki Azalea Hybrids). (In Japanese with English abstract)
Koshiro Kawase
vol.2 (1990)
Clonal propagation of Paphiopedilum by tissue culture (1) in vitro culture of ovaries, flower stalks and undeveloped flower buds. (In Japanese with English abstract)
Koshiro Kawase
In Vitro Shoot Induction and Plant Regeneration from Flower Buds in Paphiopedilum Orchids
Species of Paphiopedilum, commonly known as slipper orchids, are extremely diverse in color, shape and size of their flowers, attracting orchid lovers worldwide; however, no explant from mature plants has been successfully mass propagated in vitro. Nearly all slipper orchids are traded as potted plants through in vitro germinated hybrid seeds that lack uniformity and are unpredictable in their traits, which will not be known until many years later when the plants are mature enough to flower. Using seeds or seedlings as the source material for tissue culture propagation suffers this same serious drawback. We report here the high-frequency direct induction of shoots and regeneration of plants from sectioned young flower buds (FBs) of fully mature plants in two hybrid species. The induction rates were 57-75%, and all plants survived in a greenhouse. Because the plants were produced directly from the meristems without going through the callus stage, they are expected to have the same genetic traits as their mother plants. The phenotype of the regenerated plants is therefore predictable and consistent, which is particularly important for the commercial micropropagation production and the conservation of those very few elite or near-extinct Paphiopedilum plants. We also found that the small bract at the FB base harbored a new miniature FB, which further harbored a primitive FB with dome-shaped meristem-like tissues that presumably led to the plant induction. The reiteration of this pattern resulted in a scorpioid cyme inflorescence architecture in the multifloral Paphiopedilum species, and its failure to reiterate resulted in a single flower. This finding offers a lead to further explore both the micropropagation process and the flower organogenesis of Paphiopedilum plants.
Yu-Ching Tsai, Yu-Ju Liao, and Yung-Wei Sun (from left to right) in an orchid tissue culture room.
Yu-Ju Liao, Yu-Ching Tsai, Yung-Wei Sun, Ruey-Song Lin, Fang-Sheng Wu. In vitro shoot induction and plant regeneration from flower buds in Paphiopedilum orchids. In Vitro Cellular & Developmental Biology-Plant, 47:702-709, 2011.
The Duplicated B-class MADS-Box Genes Display Dualistic Characters in Orchid Floral Organ Identity and Growth
Plant Cell Physiol (2011) 52 (9): 1515-1531. doi: 10.1093/pcp/pcr092 First published online: July 13, 2011 This article appears in:Special Issue Articles: Flowering
Zhao-Jun Pan1,
Chih-Chin Cheng1,
Wen-Chieh Tsai2,3,
Mei-Chu Chung4,
Wen-Huei Chen3,
Jer-Ming Hu5,* and
Hong-Hwa Chen1,2,3,*
+ Author Affiliations
1Department of Life Sciences, National Cheng Kung University, Tainan 701, Taiwan
2Institute of Tropic Plant Sciences, National Cheng Kung University, Tainan 701, Taiwan
3Orchid Research Center, National Cheng Kung University, Tainan 701, Taiwan
4Institute of Plant and Microbial Biology, Academia Sinica, Taipei 115, Taiwan
5Institute of Ecology and Evolutionary Biology, National Taiwan University, Taipei 106, Taiwan
*Corresponding authors: Hong-Hwa Chen, E-mail, hhchen@mail.ncku.edu.tw; Fax, +886-6-235-6211; Jer-Ming Hu, E-mail, jmhu@ntu.edu.tw; Fax, +886-2-368-6750
Abstract
Orchidaceae are an excellent model to examine perianth development because of their sophisticated floral architecture. In this study, we identified 24 APETALA3 (AP3)-like and 13 PISTILLA (PI)-like genes from 11 species of orchids and characterized them into four AP3- and two PI-duplicated homologs. The first duplication event in AP3 homologs occurring in the early evolutionary history of the Orchidaceae gave rise to AP3A and AP3B clades. Further duplication events resulted in four subclades, namely AP3A1, AP3A2, AP3B1 and AP3B2, during the evolution of Orchidaceae. The AP3 paralogous genes were expressed throughout inflorescence and floral bud development. From the in situ hybridization results, we noticed that the transition timings from ubiquitous to constrained expression in floral organs for both clades are different. The transition point of expression of the AP3A clade (clades 3 and 4) was at the late floral organ primordia stage. In contrast, that for the AP3B clade (clades 1 and 2) was not observed until the late inflorescence and floral bud stages. In addition, the AP3 orthologous genes revealed diverse expression patterns in various species of orchids, whereas the PI homologs were uniformly expressed in all floral whorls. AP3A2 orthologs play a noticeable role in lip formation because of their exclusive expression in the lip. Further evidence comes from the ectopic expression of AP3A2 detected in the lip-like petals extending from the lip in four sets of peloric mutants. Finally, a Homeotic Orchid Tepal (HOT) model is proposed, in which dualistic characters of duplicated B-class MADS-box genes are involved in orchid perianth development and growth.
花茎の出方
2014.1.24 花芽分化
2011.3.3 掲載、主な属の新芽の出方と咲き方のあらまし